前回の続きはしません(笑)
今日の一本はDevelopmentの最新のですね。
東京医科歯科大の竹田秀先生(COE准教授)の研究成果です。

「Runx1とRunx2は胸骨の形態形成において協調して働く」

Development. 2010 Apr;137(7):1159-67. Epub 2010 Feb 24.
Runx1 and Runx2 cooperate during sternal morphogenesis.

Kimura A, Inose H, Yano F, Fujita K, Ikeda T, Sato S, Iwasaki M, Jinno T, Ae K, Fukumoto S, Takeuchi Y, Itoh H, Imamura T, Kawaguchi H, Chung UI, Martin JF, Iseki S, Shinomiya K, Takeda S.

Department of Orthopaedics, Graduate School, Tokyo Medical and Dental University, Tokyo 113-8519, Japan.

Chondrocyte differentiation is strictly regulated by various transcription factors, including Runx2 and Runx3; however, the physiological role of Runx1 in chondrocyte differentiation remains unknown. To examine the role of Runx1, we generated mesenchymal-cell-specific and chondrocyte-specific Runx1-deficient mice [Prx1 Runx1(f/f) mice and alpha1(II) Runx1(f/f) mice, respectively] to circumvent the embryonic lethality of Runx1-deficient mice. We then mated these mice with Runx2 mutant mice to obtain mesenchymal-cell-specific or chondrocyte-specific Runx1; Runx2 double-mutant mice [Prx1 DKO mice and alpha1(II) DKO mice, respectively]. Prx1 Runx1(f/f) mice displayed a delay in sternal development and Prx1 DKO mice completely lacked a sternum. By contrast, alpha1(II) Runx1(f/f) mice and alpha1(II) DKO mice did not show any abnormal sternal morphogenesis or chondrocyte differentiation. Notably, Runx1, Runx2 and the Prx1-Cre transgene were co-expressed specifically in the sternum, which explains the observation that the abnormalities were limited to the sternum. Histologically, mesenchymal cells condensed normally in the prospective sternum of Prx1 DKO mice; however, commitment to the chondrocyte lineage, which follows mesenchymal condensation, was significantly impaired. In situ hybridization analyses demonstrated that the expression of alpha1(II) collagen (Col2a1 - Mouse Genome Informatics), Sox5 and Sox6 in the prospective sternum of Prx1 DKO mice was severely attenuated, whereas Sox9 expression was unchanged. Molecular analyses revealed that Runx1 and Runx2 induce the expression of Sox5 and Sox6, which leads to the induction of alpha1(II) collagen expression via the direct regulation of promoter activity. Collectively, these results show that Runx1 and Runx2 cooperatively regulate sternal morphogenesis and the commitment of mesenchymal cells to become chondrocytes through the induction of Sox5 and Sox6.

Runx2とRunx3などの転写因子によって、軟骨細胞の分化は厳密に制御されている。
しかし、軟骨細胞におけるRunx1の生理的な意義はわかっていない。そこで筆者らは
間葉細胞特異的にRunx1とRunx2をノックアウトしたマウスと
軟骨細胞特異的にRunx1とRunx2をノックアウトしたマウスとを作成し、
その生理的な役割を明らかにしようと実験を行った。
おもしろいことに、間葉細胞に特異的にダブルでノックアウトしたマウスで
胸骨が形成されないことが分かった。
Runx1とRunx2とPrx1がともに発現するのが胸骨というのもデータを支持している。
組織学的な解析により、予定胸骨領域の間葉凝集は正常だが
その後の軟骨細胞への傾倒に異常があることがわかった。
それは、Col2a1、Sox5、Sox6の発現が有意に減少している一方で
Sox9の発現は影響を受けていないことから示唆された。
分子メカニズムに迫るところでは、Runx1とRunx2がSox5/6を誘導することも
示している。
と、いうわけで
非常に興味深い結果が得られたわけですが
Runx1とRunx2がSox5/6を誘導する、というのは
意外な結果でした。
いままでの研究とあわせると
Sox9がSox5/6を誘導できると考えていたわけですが
どうやらそこにはさらにRunx1とRunx2が必要なのかもしれません。
(少なくとも胸骨においては)
どのようにしてSox9とRunx1とRunx2がSox5/6の誘導を行っているのか
さらなる分子メカニズムの解明が待ち遠しいですね。
さらに、軟骨細胞特異的にダブルノックアウトにしても
何も表現型が出ないということもおもしろいですね。
もしかしたら、それらの組織ではRunx3が機能しているのかもしれませんね。
今後、これらの可能性をさらに追求していって
軟骨分化の解明につながるとおもしろいですね!

どうでもいいことですが
竹田先生の経歴等を調べていて
たまたま見つけたのですが
筆頭著者の木村文子さん、
とてもきれいな方でびっくりしました。
どこのサイトかよくわからないのですが
→http://www.tmd.ac.jp/mri/coet/member.html#member

今日の二本

Tissue Eng. 2007 Apr;13(4):831-42.
In vitro cartilage tissue formation by Co-culture of primary and passaged chondrocytes.

Gan L, Kandel RA.

Mount Sinai Hospital, Toronto, Ontario, Canada.

Passaging chondrocytes to increase cell number is one way to overcome the major limitation to cartilage tissue engineering, which is obtaining sufficient numbers of chondrocytes to form large amounts of tissue. Because neighboring cells can influence cell phenotype and because passaging induces dedifferentiation, we examined whether coculture of primary and passaged bovine articular chondrocytes in 3-dimensional culture would form cartilage tissue in vitro. Chondrocytes passaged in monolayer culture up to 4 times were mixed with primary (nonpassaged) chondrocytes (5-40% of total cell number) and grown on filter inserts for up to 4 weeks. Passaged cells alone did not form cartilage, but with the addition of increasing numbers of primary chondrocytes, up to 20%, there was an increase in cartilage tissue formation as determined histologically and biochemically and demonstrated by increasing proteoglycan and collagen accumulation. The passaged cells appeared to be undergoing redifferentiation, as indicated by up-regulation of aggrecan, type II collagen, and SOX9 gene expression and decreased type I collagen expression. This switch in collagen type was confirmed using Western blots. Confocal microscopy showed that fluorescently labeled primary cells were distributed throughout the tissue. This coculture approach could provide a new way to solve the problem of limited cell number for cartilage tissue engineering.

PMID: 17253927 [PubMed - indexed for MEDLINE]


アブストのみを読んだ。

筆者らは初代軟骨細胞とケイダイを重ねた軟骨細胞を
3次元培養系で共培養(混ぜて培養)すると軟骨組織を形成するかを調べた。
4回のケイダイをした初代軟骨細胞を0回ケイダイの軟骨細胞と混ぜ
フィルターインサート上で3次元培養すると、
0回ケイダイ軟骨細胞を混ぜたときのみ、4週間後に軟骨組織を
形成させることができた。
筆者らはケイダイを重ねた軟骨細胞に再分化がおきたと主張しており
この手法を使えば、初代軟骨細胞を継ぎ足していけば
ケイダイ数の制限の壁を超えられるのではないかと提案している。





二本目

Stem Cells. 2004;22(7):1152-67.
Directing stem cell differentiation into the chondrogenic lineage in vitro.

Heng BC, Cao T, Lee EH.

Faculty of Dentistry, National University of Singapore, Singapore.

A major area in regenerative medicine is the application of stem cells in cartilage tissue engineering and reconstructive surgery. This requires well-defined and efficient protocols for directing the differentiation of stem cells into the chondrogenic lineage, followed by their selective purification and proliferation in vitro. The development of such protocols would reduce the likelihood of spontaneous differentiation of stem cells into divergent lineages upon transplantation, as well as reduce the risk of teratoma formation in the case of embryonic stem cells. Additionally, such protocols could provide useful in vitro models for studying chondrogenesis and cartilaginous tissue biology. The development of pharmacokinetic and cytotoxicity/genotoxicity screening tests for cartilage-related biomaterials and drugs could also utilize protocols developed for the chondrogenic differentiation of stem cells. Hence, this review critically examines the various strategies that could be used to direct the differentiation of stem cells into the chondrogenic lineage in vitro.


レビューです。
これは、シンガポール大学の歯科学部のLeeさんのところのレビューです。
FREEなんでだれでも読めます


このレビューでは、幹細胞から軟骨細胞系統への直接のin vitro分化の方法について
のさまざまな戦略を徹底的に調べたそうです。

まず言及しているのはES(胚性幹細胞)を使うかMSC(間葉系幹細胞)を
使うのかという選択肢についてです。これ以外の幹細胞は
コントロバーシャルな面が多いので(細胞が融合していたりしてまれな例をみていると主張)
扱わないそうです。
結論はMSC1のほうが、軟骨にいきやすいし、増殖もいいし、テラトーマ形成がない等の
理由で好まれる、と主張しているようです

次はdefined culture milieu=明確な培養環境、について言及しています。
すなわち、serumフリーで、決まった栄養素なり増殖因子なりを溶かした
培地で飼おう、というものです。
serumフリーにすると、増殖が悪く、アポトーシスにいたりやすく、接着性が低い
などの大きなチャレンジがあります。
TGFファミリーの増殖因子なんかをいれると
軟骨分化を促進するそうです。
私が興味をもったのはGDF5が軟骨分化と骨分化を促進する可能性があるのを
知っておもしろかったです。


ちょっと今日はもう遅いのでこのくらいにしておきます。
また明日以降、続きを読めたら報告します。






今日の一本
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/20219243#

Biomaterials. 2010 Mar 8. [Epub ahead of print]
A comparison of the influence of material on in vitro cartilage tissue engineering with PCL, PGS, and POC 3D scaffold architecture seeded with chondrocytes.

Jeong CG, Hollister SJ.

Department of Biomedical Engineering, University of Michigan, Ann Arbor, MI 48109-2125, USA.

The goal of this study was to determine material effects on cartilage regeneration for scaffolds with the same controlled architecture. The 3D polycaprolactone (PCL), poly (glycerol sebacate) (PGS), and poly (1,8 octanediol-co-citrate) (POC) scaffolds of the same design were physically characterized and tissue regeneration in terms of cell phenotype, cellular proliferation and differentiation, and matrix production were compared to find which material would be most optimal for cartilage regeneration in vitro. POC provided the best support for cartilage regeneration in terms of tissue ingrowth, matrix production, and relative mRNA expressions for chondrocyte differentiation (Col2/Col1). PGS was seen as the least favorable material for cartilage based on its relatively high de-differentiation (Col1), hypertrophic mRNA expression (Col10) and high matrix degradation (MMP13, MMP3) results. PCL still provided microenvironments suitable for cells to be active yet it seemed to cause de-differentiation (Col1) of chondrocytes inside the scaffold while many cells migrated out, growing cartilage outside the scaffold. Copyright © 2010 Elsevier Ltd. All rights reserved.


ミシガン大学の医療工学分野から発表された論文です。
彼らの専門は「Biomaterials」すなわち生体材料の開発です。
この論文では、PCL、PGS、POCの三種類の素材を使って(土台の形は同じに形成)、
そこに軟骨細胞を植えて軟骨組織の産生量と質のよさを比較したという報告です。
今回の論文からはPOCで作られた土台に軟骨細胞を植えたときがもっとも産生量が多く、
かつ軟骨細胞としての特性が高いこと(Col1が少なくCol2a1が多い)を報告しています。

このような分野があることを初めて知ったので記事にしてみました。