ジチオトレイトール (dithiothreitol, DTT) またはジチオスレイトールは低分子酸化還元剤のひとつ。分子式は C4H10O2S2 であり、還元型では直鎖状、酸化型ではジスルフィド結合によって6員環となる。この名称は四炭糖のトレオースに由来している。ジチオエリトリトール (DTE) とはエピマー異性体)の関係にある。クリーランド試薬 (Cleland's reagent)・クレラン試薬とも呼ぶ。SDSポリアクリルアミドの電気泳動で用いられる。

還元剤

DTTは分子内ジスルフィド結合による6員環を形成する傾向が強いことから、非常に強い還元剤である。酸化還元電位はpH 7で-0.33Vである。典型的なジスルフィド結合は、下図のような連続したチオール/ジスルフィド交換反応により還元される。2つめのチオール基は環を閉じようとする傾向が強いため中間体は不安定で、酸化型DTTが生じてジスルフィド結合が還元される。チオール基のpKaは通常8.3程度であり、負に帯電したチオレート型の -S- だけが反応性を持っているため、DTTの還元力はpHが7以上の場合に限られる。

 

 

利用

DTTの利用法として良くあるのはチオール化したDNAを還元して「脱保護」するものである。チオール化DNAの末端の硫黄原子は(特に酸素存在下の)溶液中で二量体を作りやすい。例えばバイオセンサーとして金表面にDNAを固定化するような場合、二量体が形成されるとカップリング反応の効率が著しく低下する。そこでDNA溶液にDTTを加えて反応を助け、その後濾過やクロマトグラフィーによってDTTを除去(「脱塩」)する。

DTTはタンパク質ジスルフィド結合を還元し、タンパク質のシステイン残基の間で分子内または分子間のジスルフィド結合が形成されないようにするためによく使われる。しかしDTTは埋没した(溶液にさらされていない)ジスルフィド結合を還元することはできないので、ジスルフィド結合の還元は高温または高濃度の変性剤(6M塩酸グアニジン、8M尿素、1% SDSなど)を加えた変性条件で行うことが多い。逆に、個々のジスルフィド結合が溶液にさらされているかどうかをDTTによる還元速度で分析することもできる。

DTTは酸化剤として用いることもできる。グルタチオンなど他の薬剤とは違い、ジスルフィド種が混合しないという利点がある。非常に稀なことだが、DTTの2つの硫黄原子が異なる硫黄原子とジスルフィド結合をつくりDTT付加物が生成することがある。その場合は、自由なチオール基がないためDTTは環状化できない。

性質[編集]

空気酸化を受けやすいためDTTは比較的不安定な化合物であるが、冷凍して不活性気体雰囲気下で取り扱うことにより寿命を長くすることができる。プロトン化した硫黄原子は求核性が低いため、pHが低下するとDTTの作用が落ちる。より安定で低pHでも作用する代替品 Tris(2-carboxyethyl)phosphine塩酸塩(TCEP HCl) がある。

 

 

CAS登録番号 3483-12-316096-98-3 (酸化型)
KEGG C00265
C01119 (酸化型)

SMILES[表示]

特性
分子式 C4H10O2S2
外観 白色結晶
融点

42-43 ℃ 

沸点

125-130 ℃ (2 mmHg)

への溶解度 溶ける
 

参考文献[編集]

  • Cleland WW. (1964) "Dithiothreitol, A New Protective Reagent for SH Groups", Biochemistry3, 480-482.
  • Ruegg UT and Rudinger J. (1977) "Cleavage of disulfide bonds in proteins", Methods Enzymol.47, 111.

-(2-アミノエチルアミノ)-1-ナフタレンスルホン酸ナトリウム水和物(EDANS,1)は極大励起波長336 nm,極大発光波長490 nmである蛍光色素です。

 

470-520 nmに極大吸収波長を持つ消光分子であるDABCYLと組み合わせることで,分子内で共鳴エネルギー移動(FRET)が起こり1の蛍光強度が下がります。

 

例えば,1とDABCYLの間にペプチドを結合させた分子ではFRETにより1の蛍光強度が下がりますが,ペプチド配列特異的なプロテアーゼでペプチドを切断し,DABCYLを脱離させることで蛍光強度が元に戻ります。

 

 

この方法を利用したヒト免疫不全ウイルス(HIV)のプロテアーゼや,C型肝炎ウイルスのプロテアーゼの検出1,2)が報告されています。

 

がん特有の環境は,抗がん剤の細胞毒性をがんに限定するためにしばしば利用される.

Chengらは,がん細胞のミトコンドリア付近で過剰発生している活性酸素種(ROS)に応答する高分子型抗がん剤を開発した.1) 

本剤は,疎水性ペプ チドと親水性ポリエチレングリコール(PEG)とが ROS により切断されるチオケタール(kt)リンカーで結ばれたブロック共重合体,およびミトコンドリアに作用して細胞死を誘発する KLAK 配列を含むペプチドでポリビニルアルコール側鎖 を修飾したものである.

この合成高分子は,水中で PEG を外層とする球形ナノ粒子に自己組織化するが,がん細胞内に取り込まれると kt リンカーの切断に伴う PEG の脱離によ り,表面に KLAK が向いたナノ繊維に再構築される.この 形態変化により,本剤の細胞内での蓄積性,およびミトコンドリアとの相互作用が増大し,in vivo 評価においても顕著な抗がん活性が認められた.

高分子の自己組織化能を利用した興味深いアプローチであり,自然発がんモデルでの評価など今後の進展に関心が持たれる.

 

Cheng D. B. et al., J. Am. Chem. Soc., 141, 7235-7239 (2019).

免疫学の初歩的な参考書です。

 

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私は現在、某都内国立大学大学院で働いています。

 

私の経歴としては、学士を私立大学(理工学部)で取得した後、修士・博士を現在の大学院で取得しております。

 

これまでの経験を活かし、外部からの院試を考えている方で、院試についてもしくは研究室を変更することについて相談があれば、ご自由にどうぞ。

私が勤務している某都内大学院、院試には当然外部からの受験者が多数います。

 

その中で、受験者のボーダーは毎年かなり曖昧で、内部生はよっぽどのことがない限り落ちないと言われています。

 

大学院教育について思うことを書いていきたいと思います。

 

 

まず、理系大学院生の日常について、研究分野が実験系か理論系かで大きく異なるので、今回は実験系について記載します。

 

 

私が一番問題たと感じるのは、指導教官が絶対の権力を握り、学生を使い捨ての労働力のようにコキ使っていいる現場に関して、思うことを書いていきたいと思います。

 

私は現在某大学の化学系の研究室に所属していますが、そこでは「コアタイムは夕方なのにも関わらず、教授が帰る夜20時過ぎまで研究室に滞在していないと怒られる」といったようなハラスメントが横行しています。